Ви є тут

СТВОРЕННЯ ТА ЗБЕРЕЖЕННЯ КОЛЕКЦІЇ ВІВСА ЗА ВИКОРИСТАННЯ БІОТЕХНОЛОГІЧНОГО МЕТОДУ

Розроблено та проаналізовано процес депонування колекції вівса in vitro, залежно від генотипу, низьких позитивних температур і складу живильного середовища.

Експериментальним шляхом відпрацьовано процес депонування вівса in vitro. Доведено, що доцільно використовувати модифіковане живильне середовище за прописом Гамборга і Евелега (GB) для депонування активної колекції вівса з додаванням БАП – 0,3 мг/л, цукрози – 50,0 г/л. Визначено вплив цитокінінів і вуглеводів та підібрано їх оптимальні концентрації у складі живильного середовища. Дослідженнями встановлено, що недоцільно використовувати для вівса кінетин незалежно від концентрацій, тому, що він забезпечує утворення додаткових пагонів, що не бажано в даному процесі. Експериментально доведено, що за концентрації цукрози 70–80 г/л у складі живильного середовища, культуральні рослини вівса мають висоту 16–25 см та кількість пагонів досягає 12–15 шт., але під час довготривалого зберігання, понад 6 місяців, вони стають більш пригніченими та спостерігається вищий відсоток уражених некрозом рослин. Визначено, що в складі живильного середовища найефективнішими були концентрації цукрози 40 і 50 г/л, які дозволяють отримати меншу кількість пагонів від 5 до 7 штук та висоту культуральних рослин вівса від 7 до 9 см.

Встановлено, що для зберігання вихідного матеріалу вівса упродовж 12 місяців найоптимальнішою позитивною температурою є +10 °С, яка забезпечує виживання рослин до 69,5 %.

Ключові слова: живильне середовище, температурний режим, концентрації, цитокініни, вуглеводи, тривалість зберігання.

 

Посилання: 

1. Станкевич Г. М., Коропенко С. В. Голозерний овес – перспективна культура для комбікормової галузі. Хранение и переработка зерна. 2008. № 7. С. 42–44.

2. Овес – стан та ефективність виробництва, нові сорти і можливості / Черчель В. Ю. та ін. Селекція і насінництво. 2014. Вип. 106. С. 183–190.

3. Економіка виробництва зерна (з основами організації і технології виробництва) : монографія / Бойко В. І. та ін. за ред. В. І. Бойка. Київ : ННЦ ІАЕ, 2008. 400 с.

4. Белокурова В. Б. Методи біотехнології в системі заходів зі збереження біорізноманіття рослин. Цитология и генетика. 2012. Т. 44, № 3. С. 58–72.

5. Шпак Л. М., Рахметов Д. Б., Левенко Б. А. Длительное хранение Stevia rebaudiana Bert. в культуре in vitro. Проблеми експериментальної ботаніки та біотехнології. Київ : Фітосоціоцентр, 2012. С. 58–85.

6. Генетические банки растений: проблемы формирования, сохранения и использования / Молканова О. И. и др. Вестник Удмуртского ун-та. Сер. : Биология. Науки о земле. 2010. Вып. 3. С. 33–39.

7. Biodiversity conservation and conservation biotechnology tools / Reed B. M. et al. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2011. Vol. 47, Iss. 1. P. 1–4. URL: http://dx.doi.org/10.1007/s11627-010-9337-0

8. Engelmann F. Use of biotechnologies for the conservation of plant biodiversity. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2011. Vol. 47, Iss. 1. P. 5–16. URL: https://doi.org/10.1007/s11627-010-9327-2

9. Rakosy-Tican E., Bors B., Szatmari A. M. In vitro culture and medium-term conservation of the rare wild species Gladiolus imbricatus. Afr. J. Biotechnol. 2012. Vol. 11. P. 14703–14712. URL: https://doi.org/10.5897/AJB12.784

10. Войтовська В. І., Недяк Т. М., Нечепоренко Л. П. Створення колекції вівса у культурі in vitro. Підвищення ефективності ресурсозберігаючих технологій на зернопереробних підприємствах : тези доповідей Всеукр. наук. конф. (м. Умань, 24–25 жовтня 2013 р.). Умань : ВПЦ «Візаві», 2013. С. 54 –55.

11. Сторожик Л. И., Войтовская В. И., Недяк Т. Н. Вегетативное размножение сорго сахарного. Земледелие и защита растений. 2015. № 3. С. 18–22.

12. In vitro bank and seed collection of wild-growing plants as a tool for plant conservation and utilization in biotechnological studies. Biotechnology and Plant Breeding Perspectives / Belokurova V. B. et al. R. K. Behl, E. Arseniuk eds. Jodhpur, India : Agrobios (Int.), Babloo Offset, 2014. P. 219–232.

13. Коваль С. Ф., Коваль В. С., Тымчук С. М., Богуславский Р. Л. Генетические коллекции: проблемы формирования, сохранения и использования. Цитология и генетика. 2003. Т. 37, № 4. С. 46–53.

14. Vitrification: morphological, physiological and ecological aspects. Cell and Tissue Culture in Forestry / Gaspar T. et al. J. M. Bonga, O. J. Durzan eds. Dordrecht, Holland : Martinus Nijhoff Publ., 1987. Vol. I. P. 152–166.

15. Rao N. K. Plant genetic resources: Advancing conservation and use through biotechnology. Afr. J. Biotechnol. 2004. Vol. 3, Iss. 2. P. 136–145. URL: https://doi.org/10.5897/AJB2004.000-2025

16. Bairu M. W., Stirk W. A., van Staden J. Factors contributing to in vitro shoot-tip necrosis and their physiological interactions. Plant Cell Tissue Organ Cult. 2009. Vol. 98, Iss. 3. P. 239–248. URL: https://doi.org/10.1007/s11240-009-9560-8

17. Altpeter F., Posselt U. K. Improved plant regeneration from cell suspensions of commercial cultivars, breeding and inbred lines of perennial rye grass (Lolium perenne L.). J. Plant Physiol. 2000. Vol. 156, Iss. 5–6. P. 790–796. URL: https://doi.org/10.1016/S0176-1617(00)80249-7

18. Burgess T. L., Blazich F. A., Nash D. L. Influence of stratification, temperature, and light on seed germination of southern sea oats. SNA Research Conference. 2001. Vol. 46. P. 394–397.

19. Cui S. X., Wang W., Zhang C. L. Plant regeneration from callus cultures in two ecotypes of reed (Phragmites communis Trinius). In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2002. Vol. 38, Iss. 4. P. 325–329. URL: https://doi.org/10.1079/IVP2002296

20. Optimization of in vitro multiple shoots clump induction and plantlet regeneration of Kentucky bluegrass (Poa pratensis) / Hu X. R. et al. Plant Cell Tissue Organ Cult. 2006. Vol. 84, Iss. 1. P. 90–99. URL: https://doi.org/10.1007/s11240-005-9009-7

21. Valero-Aracama C., Kane M. E., Wilson S. B., Philman N. L. Genotypic differences of in vitro propagated sea oats. SNA Research Conference. 2002. Vol. 47. P. 357–360.

22. Photosynthetic and carbohydrate status of easy- and difficult-to-acclimatize sea oats (Uniola paniculata L.) genotypes during in vitro culture and ex vitro acclimatization / Valero-Aracama C. et al. In Vitro Cell Dev. Biol-Plant. 2006. Vol. 42, Iss. 6. P. 572–583. URL: https://doi.org/10.1079/IVP2006822

23. Bhatt I. D., Dhar U. Combined effect of cytokinins on multiple shoot production from cotyledonary node explants of Bauhinia vahlii. Plant Cell Tissue Organ Cult. 2000. Vol. 62, Iss. 1. P. 79–83. URL: https://doi.org/10.1023/A:1006450516329

24. Grossway A., Houck C.M., Facciotti D. Potential of micromanipulation techniques for plant improvement. Nuclear techniques and in vitro culture for plant improvement : Proc. Int. Symp. on Nuclear Techniques and In Vitro Culture for Plant Improvement (Vienna, 19–23 Aug. 1985). Vienna : IAEA, 1986. С. 471–479.

25. Badr A., Desjardins Y. Sugar uptake and metabolism in tissue cultured potato plantlets cultured in liquid medium. Acta Hortic. 2007. Vol. 748. P. 265–273. URL: https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2007.748.36

26. de Klerk G. J. Stress in plants cultured in vitro. Prop. Ornam. Plants. 2007. Vol. 7, Iss. 3. P. 129–137.

27. Рябовол Л. О. Клональне мікророзмноження рослин : методичні рекомендації для проведення лабораторно-практичних занять з «Біотехнології рослин». Умань : УДАА, 2003. 18 с.

28. Кушнір Г. П., Сарнацька В. В. Мікроклональне розмноження рослин. Теорія і практика : моногр. Київ : Наук. думка, 2005. С. 242–269.

29. Клональне мікророзмноження міскантусу : метод. рек. / Роїк М. В. та ін. Київ : Нілан-ЛТД, 2013. 24 с.

30. Визначення стійкості рослин до дії алелопатично активних речовин сорго цукрового : метод. рек. / Войтовська В. І. та ін. Київ : Нілан-ЛТД, 2016. 20 с.

31. Патент на корисну модель № 85558, Україна. Спосіб клонального мікророзмноження вівса / Войтовська В. І., Нечепоренко Л. П., Недяк Т. М. (ІБКіЦБ НААН, Україна). Заяв. № U 2013 06035 від 16.05.13; Опубл. 25.11.13, Бюл. «Промислова власність». № 22.

32. Hazarika B. N. Morpho-physiological disorders in in vitro cultured plants. Sci. Hortic. 2006. Vol. 108, Iss. 2. P. 105–120. URL: https://doi.org/10.1016/j.scienta.2006.01.038

33. Глибовець А. О., Лашук С. О., Мазурець Л. М. Вплив стерилізуючих агентів, регуляторів росту, вуглеводів і гелюючих агентів на регенерацію повноцінних рослин хмелю при мікроклональному розмноженні. Plant Varieties Studying and Protection. 2012. № 3. С. 74–76. URL: https://doi.org/10.21498/2518-1017.3(17).2012.58841

34. Войтовская В. И., Сторожик Л. И., Недяк Т. Н. Оптимизация условий депонирования сорго сахарного в культуре in vitro. Научное обеспечение картофелеводства, овощеводства и бахчеводства: достижения и перспективы : сб. науч. тр. Междунар. науч.-практ. конф. (с. Кайнар, 11–12 декабря 2013 г.). Алматы, 2013. С. 170–173.

35. Бєляєва О. Г., Юрченко С. О. Культивування рослинного матеріалу in vitro для прискорення розмноження рослин. Наук. праці Полтавської ДАА. 2010. Т. 7: Енергозбереження та альтернативні джерела енергії: проблеми і шляхи їх вирішення. С. 273–276.

36. Рябовол Л. О. Розробка біотехнологічних методів і використання їх для створення вихідного селекційного матеріалу цикорію коренеплідного (Cichorium intybus L.) та буряків цукрових (Beta vulgaris L.) : автореф. дис. … д-ра с.-г. наук: 06.01.05. / ННЦ «Ін-т землеробства УААН». Київ, 2009. 40 с.

 

Завантажити статью: 
ДолученняРозмір
PDF icon storogik-agro-1-2018-50-59.pdf (24)658.33 КБ