Ви є тут

Адаптація рослин-регенерантів Hydrangea L. до умов ex vitro

Одним з основних та найбільш складних етапів мікроклонального розмноження є перенесення рослин з умов in vitro до ex vitro. Мікропагони, сформовані в культурі in vitro, мають адаптуватися до нових умов середовища, які істотно відрізняються за вологістю повітря, освітленістю, температурними коливаннями та ризиком інфікування патогенами. Саме тому, за перенесення рослин-регенерантів у нестерильні умови потрібно забезпечити їм оптимальні умови вирощування та поступову адаптацію до нових умов місцезростання. Рослини-регенеранти роду Hydrangea для дорощування з пробірок пересаджували у торф’яні диски. Культивування рослин проводили у спеціальних камерах з контрольованими умовами, після чого їх пересаджували та переносили на стелажі у теплицю для подальшого дорощування і адаптації. Дослідження проводили з трьома видами роду Hydrangea: H. macrophylla 'Nikko Blue', H. arborescens 'Annabelle', H. paniculata 'Grandiflora'. Визначено, що істотний вплив на успішність приживання рослин-регенерантів мали ґрунтові умови. За дорощування рослини пересаджували у контейнери, наповнені різнокомпонентними ґрунтосумішами. Встановлено, що найвищу приживаність рослин на рівні 88,3 % отримано за дорощування у субстраті з 50 % ґрунту лісового, 20 % торфу верхового мохового, 20 % піску річкового та 10 % перліту. Найгірше приживалися рослини, висаджені у лісовий ґрунт (контроль) – усього 16,9 %. За додавання до лісового ґрунту 40 % річкового піску та 10 % перліту відсоток приживаності зростав на 35,8 %, а 30 % торфу верхового мохового та 10 % піску річкового – на 54,8 %, порівняно з контролем. Таке зростання частки приживаності рослин може бути пов’язане з кращою повітропроникністю та дренажем субстрату, що забезпечило оптимальні умови для подальшого розвитку рослин.

Ключові слова: експлант, рослина-регенерант, субстрат, дорощування, приживаність.

Посилання: 
1. Джус Л.Л., Колдар Л.А. Ризогенез експлантів Silene hypanica Klokov та їх адаптація до умов ex vitro. Наукові записки Тернопільського національного педагогічного університету імені Володимира Гнатюка. 2020. № 1–2 (79). C. 48–53.
2. Небиков М.В., Манько А.Є., Єщенко О.В. Акліматизація і дорощування рослин цукрових буряків, вирощених в умовах культури in vitro. Збірник наукових праць УДАУ. 2004. Вип. 57. С. 63–72.
3. Ex vitro rooting and simultaneous micrografting of the walnut hybrid rootstock ‘Paradox’(Juglans hindsi× Juglans regia) cl.‘Vlach’ / H. Ribeiro et al. Agronomy. 2022. No 12(3). 595 p.
4. Natalchuk T., Medvedeva T., Yaremko N., Udovychenko K. Rooting and acclimatization of in vitro produced plants of Prunus cerasus L.‘Ksenia’. EHC2024: International Symposium on Genetic Resources in Horticulture: Screening, Propagation, Use, and Conservation. 2024. No 1439. Р. 283–288.
5. Медведєва Т.В. Використання аквакультури для акліматизації культивованих in vitro рослин. Садівництво. 2012. Вип. 66. С. 338–343.
6. Strategies for successful acclimatization and hardening of in vitro regenerated plants: Challenges and innovations in micropropagation techniques / N. Sharma et al. Plant Science Today (Early Access). 2023. URL: https://horizonepublishing.com/journals/ index.php/PST/article/view/2376
7. High-throughput in vitro propagation and evaluation of foliar micro-morpho-anatomical stability in Musa acuminata cv.‘Grand Nain’using 6-benzoyladenine (BOA) in the nutrient medium. / M. Manokari et al. Scientia Horticulturae. 2022. No 304. 111334 p.
8. Minas G.J. Sanitation and In Vitro Mass Micropropagation of Mum's (Chrysanthemum spp.) Cultivars Starting from Apical Meristem Tips. International Conference on Quality Management in Supply Chains of Ornamentals. 2007. No 755. Р. 317–322.
9. Колесник А.В., Сікура А.О., Гедзур Т.І. Лабораторний практикум з біотехнології. Методичні рекомендації до лабораторних робіт з циклу «Розмноження рослин in vitro» для студентів біологічного факультету денної та заочної форми навчання. Ужгород, 2023. 35 с.
10. Мамчур В.В. Адаптація рослин регенерантів Ailanthus altissima до умов ex vitro. Information and innovative technologies in education in modern conditions: XXIV International scientific and practical conference. Bulgaria: Varna, 2023. Р. 14–16.
11. Колдар Л.А. Адаптація рослин-регенерантів Prunus serrulata ‘Kansan’ та Cercis siliquastrum ‘Albida’ex vitro. Journal of Native and Alien Plant Studies. 2019. Вип. 15. С. 44–49.
12. Небиков М., Небикова Т. Мікророзмноження представників колекції горобини (Sorbus spp.) Національного дендрологічного парку «Софіївка» НАН України. Journal of Native and Alien Plant Studies. 2022. № 18. С. 137–155.
13. Mohammed M., Munir M., Ghazzawy H.S. Design and evaluation of a smart ex vitro acclimatization system for tissue culture plantlets. Agronomy. 2022. No 13(1). 78 p.
14. Небиков М.В., Єщенко О.В., Яценко А.О. Буряки з пробірки. Цукрові буряки. 2002. № 6. С. 12–14.
15. Грицак Л.Р., Дробик Н.М. Сучасні технології підвищення стійкості культивованих in vitro рослин до умов ex vitro. Фактори експериментальної еволюції організмів. 2020. № 26. С. 183–189.
16. Pirata M.S., Correia S., Canhoto J. Ex vitro simultaneous acclimatization and rooting of in vitro propagated tamarillo plants (Solanum betaceum Cav.): Effect of the substrate and mineral nutrition. Agronomy. 2022. No 12(5). 1082 p.
17. Grzelak M., Pacholczak A., Nowakowska K. Challenges and insights in the acclimatization step of micropropagated woody plants. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2024. No 159(3). 72 p.
18. Micro-morpho-anatomical transitions at various stages of in vitro development of Crinum malabaricum Lekhak and Yadav: A critically endangered medicinal plant / M. Mani et al. Plant Biology. 2023. No 25(1). Р. 142–151.
19. Morphophysiology of Ananas comosus during in vitro photomixotrophic growth and ex vitro acclimatization / J.P. Alves et al. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. 2023. No 59(1). Р. 106–120.
20. Saeedi S.A. Growth, photosynthetic function, and stomatal characteristics of Persian walnut explants in vitro under different light spectra. Frontiers in Plant Science. 2023. No 14. 1292045 p.
21. Небиков М.В., Манько О.А. Вплив нафтилоцтової кислоти (НОК) на коренеутворення у рослин цукрових буряків в культурі in vitro. Збірник наукових праць ІЦБ УААН. 2000. Вип. 3. С. 90–95.
22. Fisher R.A. Statistical methods for research workers. New Delhi: Cosmo Publications, 2006. 354 p.
23. Ермантраут Е.Р., Присяжнюк О.І., Шевченко І.Л. Статистичний аналіз агрономічних дослідних даних в пакеті STATISTICA 6: методичні вказівки. Київ, 2007. 55 с.
24. Krens F.A., Jamar D. The role of explant source and culture conditions on callus induction and shoot regeneration in sugarbeet (Beta vulgaris L.). Journal of Plant Physiology. 1989. Vol. 134 (6). P. 651–655.
25. Greer S.P., Rinehart T.A. Dormancy and Germination In Vitro Response of Hydrangea macrophylla and Hydrangea paniculata Seed to Light, Cold-Treatment and Gibberellic Acid. Journal of Environmental Horticulture. 2010. No 28 (1). P. 41–47.
26. Koutb M. Water Breakdown during Photosynthesis and Transpiration in Plants as a Scientific Miracle in the Qur’an. Journal of Interdisciplinary Qur'anic Studies. 2022. No 1(2). Р. 169–185.
Завантажити статью: 
ДолученняРозмір
PDF icon osipov_1-2026.pdf653.32 КБ