1. Лозовіцький П.С. Основи землеробства та рослинництва. Рослинництво: посібник для вищих учбових закладів. Київ, 2010. Кн. 2. 268 с.
2. Агрономічні принципи вирощування кісточкових культур. URL:
https://www.yara.ua/ crop-nutrition/fruits/stone-fruits/stone-fruit-key-facts/ agronomic-principles/
3. Кушнір Г.П., Сарнацька В.В. Мікроклональне розмноження рослин. Теорія і практика. Київ: Наук. думка, 2005. 270 с.
4. Druart P. Micropropagation of Prunus species relevant to cherry fruit production. Protocols for micropropagation of selected economically-important horticultural plants. 2013. P. 119–136.
5. Мікроклональне розмноження рослин / В.В. Мацкевич та ін. Суми, 2023. 215 с.
9. Peculiarities of determining the morphogenesis of plants Corylus avellana L. and Prunus dulcis (Mill.) D.A. Webb. in vitro culture / V. Matskevych et al. Folia Forestalia Polonica, Series A – Forestry. 2022. Vol. 65(1). P. 1–14.
10. In Vitro Propagation of Virus Indexed Gisela-5 (Prunus cerasus × Prunus canescens) – Clonal Cherry Rootstock” / M. Thakur et al. IJCST. 2016.
11. Pevalek-Kozlina B., Jelaska S. Microclonal propagation of Prunus avium L. Acta Hortic. 1987. 212. P. 599–602. DOI: 10.17660/ActaHortic.1987.212.98.
12. Терек О.І., Пацула О.І. Ріст і розвиток рослин: навч. посібник. Львів: ЛНУ імені Івана Франка, 2011. 328 с.
13. Pilar Andreu, Juan A. Marín In vitro culture establishment and multiplication of the Prunus rootstock ‘Adesoto 101’ (P. insititia L.) as affected by the type of propagation of the donor plant and by the culture medium composition Scientia Horticulturae. 2005. Vol. 106. Issue 2. P. 258–267.
14. Jakab-Ilyefalvi Zsolt, Pamfil Doru, Clapa Doina, Fira Alexandru. In vitro regeneration and meristem culture of Prunus domestica CV. Bulletin of University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine ClujNapoca. Horticulture. 2008. P. 1843–5394.
15. Recovery of virus-free Almond (Prunus dulcis) cultivars by somatic embryogenesis from meristem undergone thermotherapy / M. Ebrahimi et al. Sci Rep. 2022. 12. 14948. DOI: 10.1038/s41598-022-19269-3.
16. Advances in sanitation methods for fruit tree species through in vitro technologies: Possibilities and limits / K. Ben Mahmoud et al. 2017.
17. Zarghami R., Ahmadi B. Production of Plum Pox Virus-Free and Prunus Necrotic Ringspot VirusFree Regenerants Using Thermotherapy and MeristemTip Culture in Prunus persica L. Erwerbs-Obstbau 65. 2023. Р. 719–727. DOI: 10.1007/s10341-022-00731-5.
18. In vitro propagation of a semi-dwarfing cherry rootstock / A.S. Muna et al. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 59. 1999. P. 203–208. DOI: 10.1023/A:1006444925445.
19. Quoirin M., Lepoivre P. Improved media for in vitro culture of Prunus sp. Acta Hortic. 1977. 78. P. 437–442. DOI: 10.17660/ActaHortic.1977.78.54.
20. Nas M., Read P. A hypothesis for the development of a defined tissue culture medium of higher plants and micropropagation of hazelnuts. Scientia Horticulturae. 2004. 101. P. 189–200. DOI: 10.1016/j.scienta.2003.10.004.
21. Мацкевич В.В., Кімейчук І.В., Мацкевич О.В., Шита О.П. Світовий досвід, перспективи в Україні розмноження фундука та мигдалю. Агробіологія. 2022. № 1. С. 179–191.
22. Pérez-Tornero O., Burgos L. Apricot micropropagation. Protocols for Micropropagation of Woody Trees and Fruits. Springer, Dordrecht. 2007. DOI: 10.1007/978-1-4020-6352-7_25.
23. Murashige T., Skoog F. A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue 234 Агробіологія, 2024, № 1 agrobiologiya.btsau.edu.ua Cultures. Plant Physiology. 1962. 15. P. 473–497. DOI: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x/.
24. Lloyd G., McCown. Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. B., Int. Plant Prop. Soc. Proc. 1980. 30. 421 p.
25. Mohammad Matani Borkheyli, Seied Mehdi Miri, and Amrollah Nabigol. In vitro multiplication and rooting of GF677 rootstock. Journal of horticulture and postharvest research. 2021. Vol. 4(2). P. 243–252.
26. Ahmad T., Abbasi N.A., Hafiz I.A., Ali A. Comparison of sucrose and sorbitol as main carbon energy sources in micropropagation. Pak. J. Bot. 2007. 39. P. 1269–1275.
27. Non-climacteric ripening and sorbitol homeostasis in plum fruits / H. Kim et al. Plant Sci. 231. 2015. P. 30–39. DOI: 10.1016/j.plantsci.2014.11.002.
28. Redgwell, Bieleski R.L. Sorbitol-1-phosphate and sorbitol-6-phosphate in apricot leaves Phytochemistry. 1978. Vol. 17. Issue 3. P. 407–409.
29. Silencing leaf sorbitol synthesis alters long-distance partitioning and apple fruit quality / G. Teo et al. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2006. 103 (49). 18842–7. DOI: 10.1073/pnas.0605873103.
30. Cristina Weiser Ritterbusch, Simone Ribeiro Lucho, Elizete Beatriz Radmann, Valmor João Bianchi. Effect of Cytokinins, Carbohydrate Source and Auxins on In Vitro Propagation of the ‘G × N-9’ Peach Rootstock. International Journal of Fruit Science. 2020. DOI: 10.1080/15538362.2020.1822266.
31. Kose Sevde, Canli Fatih. In vitro Propagation of ‘Garnem’ (P. persica x P. dulcis) Rootstock. Plant Molecular Biology & Biotechnology. 2015. 5. P. 25–30.
32. Наталчук Т.А., Медведєва Т.В., Запольський Я.С., Барбан О.Б. Особливості впровадження в культуру in vitro вишні сорту «Ксенія» та вишні сорту «Василиса прекрасна». Вивчення та охорона сортів рослин. 2020. 16 (1). С. 97–102. DOI: 10.21498/2518-1017.16.1.2020.201353.
33. Охорона прав на сорти рослин. Бюлетень. Український інститут експертизи сортів. Вінниця: ТОВ «ТВОРИ», 2020. Вип. 5. 395 с.
34. Plant cell and tissue culture. Phytopathology. Biochemicals. Catalogye 2010–2012 / Catalogye edited by drs / F.T.M. Kors. Duchefa Biochemie B.V. 194 p. URL:
http://brochure.duchefa-biochemie.com/ Duchefa_catalogus_2010_2012/.
35. Шита О.П., Філіпова Л.М., Мацкевич В.В. Особливості загальної стратегії живцювання мигдалю in vitro. ІV Міжнародна науково-практична інтернет-конференція «Сучасні виклики і актуальні проблеми лісівничої освіти, науки та виробництва». Біла Церква: БНАУ, 2024. C. 122–124.