Ви є тут
Світовий досвід, перспективи в Україні розмноження фундука та мигдалю
Фундук і мигдаль є перспективними промисловими культурами завдяки яким можна диферсифікувати ризики, викликані кліматичними змінами. В Україні створено вітчизняні адаптовані до місцевих умов сорти мигдалю, які потребують швидкого розмноження. Створення високопродуктивних та стійких до нових хвороб сортів фундука також потребує розмноження цієї культури в значних обсягах. Серед усіх методів вегетативного розмноження мікроклональне є найбільш перспективним. Перед введенням в асептичну культуру материнські рослини вирощують в умовах, які мінімізують ендогенне накопичення в тканинах контамінантів та фенолоподібних речовин. Для деконтамінації експлантів застосовують хіпохлорит натрію та препарат Бланідас 300. Перспективним покращенням стерилізації експлантів фундука є введення в живильне середовище за первинного культивування біоциду РРМ. Зменшення контамінування експлантів мигдалю зменшується за збільшення концентрації іонів Cu, Ag в середовищі. Основними детермінантами онтогенезу in vitro є елементи мінерального живлення та фітогормони. Поряд з класичними середовищами (DKW, QL, MS, WPM) для фундука перспективним є середовище NRM, а для мигдалю NAM. Надлишок в середовищі одних елементів знижує засвоєння інших, що проявляється візуально. Так, надлишок азоту викликає симптоми недостатнього засвоєння кальцію, міді. Посилюється цей процес за зростання температури. Також пагони регенерантів вкорочені, потовщені та мають надмірну гіпегідратацію тканин. Турецькими вченими запропоновано оригінальну методику створення прописів середовищ для мигдалю та фундука за кількісним вмістом елементів в насінні цих рослин. Найбільш поширеними фітогормонами на етапі мультиплікації є цитокініни. Для обох культур більшість дослідників віддає перевагу бензиламінопурину. Для індукції ризогенезу найчастіше застосовують індолілмасляну кислоту. Для адаптації регенерантів ефективним є субстрат на основі перліту. Як вид адаптації пропонують щепити регенеранти на проростки гіркого мигдалю. В Україні розроблена методика фотоавтотрофного мікроклонального розмноження. Ці технологічні прийоми поряд із вегетативним розмноженням дозволяють проводити адаптацію регенерантів в короткі терміни. Вказана ефективність досягається активізацією процесів фотосинтезу, збільшенням вмісту вуглекислого газу та інтенсивності освітлення.
Ключові слова: фундук, мигдаль, зміна клімату, мікроклональне розмноження, детермінанти, живильні середовища, фітогормони.
https://orcid.org/0000-0002-9100-1206Посилання:
1. Кліматичні зміни та їх вплив на сфери економіки України: монографія / Степаненко С.М. та ін. Одеса: Вид. «ТЕС», 2015. 520 с.
2. Проблеми мікроклонального розмноження фундука / Андрієвський В.В. та ін. Агробіологія: зб. наук. праць. №1. Біла Церква: БНАУ, 2019. С. 74–84.
3. Особливості мінерального та повітряного живлення фундука. Аграрна освіта та наука: досягнення і перспективи розвитку: матеріали ІІІ Міжнародної науково-практичної конференції (Біла Церква, 30–31 березня 2022 р.) / Мацкевич О.В. та ін. Біла Церква: БНАУ. 2022. С. 65–67.
4. Моуліс В., Бабанський В., Мацкевич В. Хорватська інтенсивна технологія вирощування фундука. Сучасні виклики і актуальні проблеми лісівничої освіти, науки та виробництва: матеріали І Міжнародної науково-практичної інтернет-конференції (Біла Церква, 15 квітня 2021 р.). Біла Церква: БНАУ. 2021. С. 113–116.
5. Оцінка перспективності сортів та збагачення генофонду фундука в дендропарку ХНАУ / Полив’яний А.М. та ін. Вісник ХНАУ № 1, 2013. Лісове господарство. С. 199–202.
6. Філіпова Л.М., Мацкевич В.В., Шита О.П. Трофічні детермінанти онтогенезу регенерантів мигдалю in vitro. Генетика і селекція в сучасному агрокомплексі: VI Всеукраїнська науково-практична конференція. Умань. 2021. С. 202–204.
7. In Vitro Propagation of Traditional Italian Hazelnut Cultivars as a Tool for the Valorization and Conservation of Local Genetic Resources / Bacchetta L. et al. 2008. HortScience horts. 2022. 43(2). Р. 562–566. URL: https://journals.ashs.org/hortsci/ view/journals/hortsci/43/2/article-p562.xml.
8. Коли цвітуть мигдалеві сади. Реалії та перспективи розвитку промислових мигдалевих садів в Україні: науково-практичний семінар. URL: https://osau.edu.ua/naukovo-praktychnyj-seminar- koly-tsvitut-mygdalevi-sady-realiyi-ta-perspektyvyrozvytku-promyslovyh-mygdalevyh-sadiv-v-ukrayini/.
9. Choosing Plants for a Hazelnut Orchard in New Jersey / Muehlbauer M. et al. URL: https://njaes.rutgers.edu/e368/.
10. Survey of Corylus Resistance to Anisogramma anomala from Different Geographic Locations / Thomas J. Molnar et al. HORTSCIENCE. 45(5). 2010. Р. 832–836.
11. Пінчук Н.В., Коваленко Т.М., Вергелес П.М. Садово-паркова фітопатологія: навч. посіб. / за ред. Н.В. Пінчук. Вінниця: ВНАУ. 2020. 380 с.
12. Мигдаль: посадка і догляд, види і сорти. URL: https://ua.supermg.com/sadovi-roslini/6835- migdal%D1%8C-posadka-i-dogljad-vidi-i-sorti.html.
13. Охорона прав на сорти рослин: бюлетень. Український інститут експертизи сортів. Вінниця: ТОВ «ТВОРИ», 2020. Вип. 5. 395 с.
14. Мацкевич В.В. Мікроклональне розмноження видів рослин in vitro та їх постасептична адаптація. Кваліфікаційна наукова праця на правах рукопису: дис. … д-ра с.-г. наук: 06.01.05. Суми, 2020. 478 c.
15. Подгаєцький А.А., Мацкевич В.В., Подгаєцький А.А. Особливості мікроклонального розмноження видів рослин: монографія. Біла Церква: Білоцерківський національний аграрний університет, 2018. 209 с.
16. In vitro rooting of almond (Prunus Dulcis Mill.). In vitro cellular & developmental biology / Phillip J. Ainsley et al. Рlant. Society for In Vitro Biology. 2001. Vol. 37. No. 6. P. 778–85. URL: http:// www.jstor.org/stable/4293547. 17. Michelle W., Margaret S. The australian almond breeding program AL99008. The University of Adelaide Final Report 1 June 2007.
18. Кушнір Г.П., Сарнацька В.В. Мікроклональне розмноження рослин. К., Наук. думка, 2005. 271 с.
19. Effect of Culture Media and Plant Growth Regulators on Shoot Proliferation and Rooting of Internode Explants from Moroccan Native Almond (Prunus dulcis Mill.) Genotypes / Kodad S. et al. International Journal of Agronomy. 2021. DOI: 10.1155/2021/9931574.
20. Xhulaj D., Kongjika E., Skerdilaid X. In vitro micropropagation and conservation of Prunus native stone fruit trees. 2015. 44. P. 2278–3229.
21. Micrografting of almond (Amygdalus communis) cultivar ‘Nonpareil’ / Çiğdem I. et al. Australian Journal of Science AJCS. 2011. 5(1). Р. 61–65.
22. Shekafandeh A., Ghasem M. Effect of hotwater and cold treatments on reducing contamination in almond tissue culture Journal of Applied Horticulture. 2009. 11(2). P. 143–145.
23. Mathematical Modeling and Optimizing of in Vitro Hormonal Combination for G × N15 Vegetative Rootstock Proliferation Using Artifcial Neural Network-Genetic Algorithm (ANN-GA) / Arab M.M. et al. Front Plant Sci. 2017. Nov 1;8:1853. DOI: 10.3389/fpls.2017.01853.
24. Karimi S., Yadollahi A. Using putrescine to increase the rooting ability of hardwood cuttings of the peach × almond hybrid GF677 J Agrobiol. 2012. 29(2). P. 63–69. DOI: 10.2478/v10146-012-0010-6.
25. Подгаєцький А.А., Мацкевич В.В., Врублевський О.Т. Використання біоциду РРМ як додаткового деконтамінанта в процесі мікроклонального розмноження рослинних об’єктів. Вісник Сумського національного аграрного університету: науковий журнал. Агрономія і біологія. Суми: СНАУ, 2016. Вип. 9 (32). С. 159–163.
26. An integrated strategy to identify key genes in almond adventitious shoot regeneration / Margarida A.S. et al. Journal of Experimental Botany. 2009. Vol. 60. Issue 14. P. 4159–4173. DOI: 10.1093/jxb/erp250.
27. Mazari A, Camm E.L. Effect of cytokinins on plastid development and photosynthetic polypeptides during organogenesis of Pinus pondero Dougl. cotyledons cultured in vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2005. Vol. 33. Р. 81–89.
28. An efcient regeneration and rapid micropropagation protocol for Almond using dormant axillary buds as explants / Choudhary R. et al. Indian J Exp Biol. 2015. Р. 462–467.
29. Nas M., Read P. A hypothesis for the development of a defned tissue culture medium of higher plants and micropropagation of hazelnuts. Scientia Horticulturae. 2004. 101. P. 189–200. DOI: 10.1016/j.scienta. 2003.10.004.
30. Nas M.N., Yüksel B., Sevgin N. Shortcut to long-distance developing of a tissue culture medium: micropropagation of mature almond cultivars as a case study. Turkish Journal of Botany. 2013. 37(6). Р. 1134–1144.
31. Трофічні та гормональні детермінанти онтогенезу Actinidia chinensis var, deliciosa (a.Chev.) in vitro на етапі мультиплікації / Подгаєцький А.А. та ін. East European Scientifc Journal. 2020. №10(62). Part 1. Р. 17–24.
32. Kester D.E., Tabachnik L., Negueroles J. Use of micropropagation and tissue culture to investigate genetic disorders in almond cultivars. Acta Hortic. 1977. 78. P. 95–102. DOI: 10.17660/ActaHortic. 1977.78.10.
33. Micropropagation of the hazelnut / Bassil N. et al. Corylus avellana. Acta Hortic. 1992. 300. P. 137– 140. DOI: 10.17660/ActaHortic.
34. Kose Sevde, Canli, Fatih. In vitro Propagation of ‘Garnem’ (P. persica x P. dulcis) Rootstock. Plant Molecular Biology & Biotechnology. 2015. 5. P. 25–30.
35. Channuntapipat Chockpisit, Sedgley Margaret, Collins Graham. Micropropagation of almond cultivars Nonpareil and Ne Plus Ultra and the hybrid rootstock Titan×Nemaguard. Scientia Horticulturae. 2003. 98. P. 473–484. DOI: 10.1016/S0304-4238(03)00067-0.
36. Arab M.R., Shekafandeh A. In vitro propagation of GF677 hybrid rootstock (Prunus persica × Prunus amygdalus) from mature cotyledons. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology. 2016. 91(3). Р. 236–242. DOI: 10.1080/14620316.2016.1148368.
37. In Vitro Propagation of HS314 Rootstock Prunus amygdalus X P. Persica / Dejampour J. et al. HortScience. 2011. 46. Р. 928–931. DOI: 10.21273/ HORTSCI.46.6.928.
38. Ghaem Maghami S., Ebrahimzadeh H., Shetab Boshehri S.M. Effects of some growth regulators on hazelnut (Corylus Avellana L.) micropropagation. Iranian journal of horticultural science and technology. 2010. 11(3). P. 187–196. URL: https://www.sid.ir/en/ journal/ViewPaper.aspx?id=496929.
39. Conversion of indole-3-butyric acid to indole-3- acetic acid in shoot tissue of hazelnut (Corylus) and elm (Ulmus) / Kreiser M. et al. J Plant growth regul. 2016. 35. P. 710–721. DOI: 10.1007/s00344-016-9574-5.
40. Ainsley P.J., Collins G.G., Sedgley M. In vitro rooting of almond (Prunus dulcis Mill.). 2001. In Vitro Cell.D ev.Biol.-Plant 37. P. 778–785. DOI: 10.1007/ s11627-001-0129-4.
41. In vitro micropropagation of almond (Amygdalus communis L. cv. Nonpareil) / Iıkalan Ç. et al. African Journal of Biotechnology. 2008. Vol. 7 (12). P. 1875–1880.
Завантажити статью:
| Долучення | Розмір |
|---|---|
 matskevich_2022-1-179-191.pdf | 511.44 КБ |