Ви є тут

×

Повідомлення про помилку

Warning: count(): Parameter must be an array or an object that implements Countable в bootstrap_table() (рядок 238 із /var/www/html/sites/all/themes/bootstrap/templates/system/table.func.php).

Стійкість симбіозу Rhizobium leguminosarum–Pisum sativum за дії полісахаридно-білкового комплексу в умовах штучної посухи

З огляду на кліматичні зміни та часті посухи актуальним є пошук способів підвищення виживаності Rhizobium leguminosarum у навколонасіннєвій зоні за передпосівної інокуляції насіння, що забезпечить формування стійкішого бобово-ризобіального симбіозу. Досліджено вплив полісахаридно-білкового комплексу (ПБК) на ефективність бактеризації насіння активними штамами R. leguminosarum в умовах недостатнього зволоження. Порівняно збереженість бульбочкових бактерій після бактеризації та оцінено її вплив на розвиток рослин і азотфіксувальну активність за оптимального (60 % повної вологоємності, ПВ) та низького (30 % ПВ) зволоження. Метою дослідження було визначення виживаності бульбочкових бактерій у навколонасіннєвій зоні та оцінка впливу бактеризації насіння гороху (Pisum sativum L.) з ПБК на утворення й масу бульбочок, азотфіксацію та початковий ріст рослин за штучної посухи. Використані методи: мікробіологічні, фізіологічні, хроматографічні та статистичні. Отримані дані показали, що бактеризація гороху сорту Царевич активними штамами R. leguminosarum позитивно впливає на ріст рослин. Виявлено залежність збереження бактерій у навколонасіннєвій зоні від рівня зволоження та штаму інокулянта. За поєднання бактеризації з ПБК виживаність бактерій була вищою, що супроводжувалося більшою масою бульбочок і вищою азотфіксацією. Встановлено, що всі показники функціонування симбіозу R. leguminosarum–Pisum sativum за посухи знижувалися порівняно з оптимальними умовами. Найефективнішою була інокуляція насіння гороху сорту Царевич штамом R. leguminosarum Г222 у поєднанні з ПБК, яка забезпечила найбільше збільшення кількості й маси бульбочок, а також високі показники азотфіксації як за оптимального, так і недостатнього зволоження.

Ключові слова: Rhizobium leguminosarum, біологічна азотфіксація, бобово-ризобіальний симбіоз, штучна посуха, полісахаридно-білковий комплекс (ПБК).

Посилання: 
1. Ford H.V., Jonesa N.H., Brendan Andrew J. Climate change and agriculture: Impacts and adaptive responses. Journal of Integrative Agriculture. 2021. 17. P. 1–15. DOI: 10.1016/S2095- 3119(17)61794-5
2. Agamil R.A., Ghramh H.A., Hashem M. Seed inoculation with Azospirillum lipoferum alleviates the adverse effects of drought stress on wheatplants. JABFQ. 2017. 90. P. 165–173. DOI: 10.5073/JABFQ.2017.090.021
3. Fenta B.A., Beebe S.E., Kunert K.J. Role of fixing nitrogen in common bean growth under water deficit conditions. Food Energy Secur. 2020. 18. 43 p. DOI: 10.1002/fes3.183
4. Phytohormones regulate accumulation of osmolytes under abiotic stress / А. Sharma et al. Biomolecules. 2019. 9(7). 285 p. DOI: 10.3390/ biom9070285
5. Han S.K., Wagner D. Role of chromatin in water stress responses in plant. J. Exp. Botany. 2014. 65(10). P. 285–299. DOI: 10.1093/jxb/ert403.
6. Apel A., Hirt H. Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress and signal transduction. Plant Biol. 2004. 55. P. 373–399. DOI: 10.1146/annurev.arplant.55.031903.141701.
7. Diversity and environmental stress responses of rhizobia bacteria from Egyptian grain legumes / H.H. Zahran et al. Aust. J. Basic Appl. Sci. 2012. 6. P. 571–583.
8. Kaushal M., Wani S.P. Plant – growth promoting rhizobacteria: drought stress alleviators to ameliorate crop production in drylands. Ann. Microbiol. 2016. 66. P. 35–42. DOI: 10.1007/s13213- 015-1112-3
9. Fang Y., Xiong L. General mechanisms of drought response and their application in drought resistance improvement in plants. Cell. Mol. Life Sci. 2015. 72(4). P. 673‒689. DOI: 10.1007/s00018-014-1767-0.
10. Mayak S., Tirosh T., Glick B.R. Plant growth-promoting bacteria that confer resistance to water stress in tomatoes and peppers. Plant Sci. 2014. 166. P. 525–530. DOI: 10.1016/j.plantsci.2003.10.025
11. Мельник В.М., Коць С.Я. Формування і функціонування симбіотичних систем соя – Bradyrhizobium japonicum за різного водозабезпечення. Фізіологія рослин та генетика. 2015. Т. 47. № 6. С. 483–490.
12. Kots S.Y., Gryshchuk O.O. Phytohormonal regulation of legume-rhizobium symbiosis. Фізіологія рослин та генетика. 2019. Vol. 51. No 1. P. 3–27. DOI: 10.15407/frg2019.01.003
13. Andrews M., Andrews M.E. Specificity in Legume-Rhizobia Symbioses. International Journal of Molecular Sciences. 2017. 18(4). 705 p. DOI: 10.3390/ijms18040705
14. Comparison of drought tolerance in nitrogen-fixing and inorganic nitrogen grown common beans / A. Lodeiro et al. Plant Sci. 2000. 154. P. 31– 41. DOI: 10.1016/S0168-9452(99)00246-0
15. Біологічний азот / В.П. Патика та ін. Київ: Світ, 2003. 424 c.
16. Gourion B., Berrabah F., Ratet P., Stacey G. Rhizobium – legume symbioses: the crucial role of plant immunity. Аcta Horticulturae. 2018. 3. P. 186– 194. DOI: 10.1016/j.tplants.2014.11.008
17. Jobby R., Jha P., Gupta A., Desai A. Biotransformation of chromium by root nodule bacteria Sinorhizobium sp. PloS ONE. 2019. 14. P. 17–20. DOI: 10.1371/journal.pone.0219387
18. Survival of several Rhizobium/Bradyrhizobium strains on different inoculant formulations and inoculated seeds / F.J. Temprano et al. International microbiology. 2002. 5(2). P. 81–86. DOI: 10.1007/ s10123-002-0067
19. Herridge D., Peoples M., Boddey M. Global inputs of biological nitrogen fixation in agricultural systems. 2008. Plant and Soil. 311. P. 11–18. DOI: 10.1007/s11104-008-9668-3
20. Lindstrom K., Mousavi S.A. Effectiveness of nitrogen fixation in rhizobia. Thematic Issue on Agricultural Biotechnology. 2020. 13. P. 57–63. DOI: 10.1111/1751-7915.13517
21. Мікробні препарати у землеробстві. Теорія і практика: монографія / В.В. Волкогон та ін. Київ: Аграрна наука, 2006. 312 с.
22. Inoculation with selected indigenous mycorrhizal complex improves Ceratonia siliqua’s growth and response to drought stress / I. Jadrane et al. Saudi J. Biol. Sci. 2021. 28. P. 825–832. DOI: 10.1016/j.sjbs.2020.11.018
23. Rai R., Dash P.K., Mohapatra T., Singh A. Phenotypic and molecular characterization of indigenous rhizobia nodulating chickpea in India. Indian Journal of Experimental Biology. 2012. 50. P. 340–350. DOI: 10.18805/LR-430
24. Моргун В. Бактеризація посівного матеріалу бобових. Пропозиція. 2007. № 2. С. 40–41.
25. Козар С.Ф., Євтушенко Т.А., Нестеренко В.М. Вплив речовин різного хімічного складу на життєздатність діазотрофів на насінні сільськогосподарських культур. Сільськогосподарська мікробіологія. 2017. Вип. 25. С. 10–17. DOI: 10.35868/1997-3004.25.10-17
26. Молоцький М.Я., Васильківський С.П., Князюк В.І., Власенко В.А. Селекція і насінництво сільськогоподарських рослин. Київ: Вища освіта, 2006. 460 с.
27. Метод збереження функціональної активності і життєдіяльності діазотрофів: пат. 147465, Україна: МПК С05F11/08, С05F11/08. Опубл. 12.05.21.
28. Єщенко В.О., Копитко П.Г., Костогриз П.В., Опришко В.П. Основи наукових досліджень в агрономії. Вінниця: ПП «ТД «Едельвейс і. К»», 2014. 332 с.
29. Волкогон В.В., Надкернична О.В., Токмакова Л.М. Експериментальна грунтова мікробіологія. Київ: Аграрна наука, 2010. 464 с.
30. Hardy R.W.F., Holsten R.D., Jackson E.K., Burns R.C. The acetylene-ethylene assay for nitrogen fixation: laboratory and field evaluation. Plant Physiology. 1968. 43(8). P. 1185−1207. DOI: 10.1104/pp.43.8.1185.
31. Методика наукових досліджень в агрономії: навч. посіб. / Е.Р. Ермантраут та ін. Харків: Харківський національний аграрний університет ім. В.В. Докучаєва, 2008. 64 с.
Завантажити статью: 
ДолученняРозмір
PDF icon voronaua_2_2025.pdf528.03 КБ