Ви є тут

Розробка окремих елементів протоколу сталого росту та розмноження суниці садової (Fragaria ananassa Duch.) в асептичних умовах

Cуниця cадова (Fragaria ananassa Duch.) є одним із найцінніших фруктів, попит на який на продовольчому ринку стабiльно високий. Одним з обмежуючих чинників одержання стабiльно високих урожаїв високої якостi cуницi є наявність захворювань, спричинених бактеріями, фітоплазмами, вірусами, віроїдами. З метою інтенсифікації технологiї вирощування суниці садової актуальною є проблема виробництва у значних обсягах генетично константного, вільного від збудників хвороб матеріалу. Актуальними технологіями, які дозволяють масово виробляти садивний матеріал з високою фітосанітарною та генетичною якістю, є застосування біотехнологічних методів. Мета дослідження – оновлення протоколу мiкроклонального розмноження суницi садової для отримання безвіврусного садивного матеріалу. Дослідження проводили в умовах лабораторії мікроклонального розмноження ТОВ «Благодатне» (Тевіттатм) Черкаської області на суниці садовiй сортів Альба та Презент. Серія досліджень проведена за принципом «step by step» на двох типах експлантів: бруньки і меристеми. Досліджено детермінанти отримання асептичної культури із брунькових та меристемних експлантів. Трофічний вплив досліджено на середовищах з різним умістом мінеральної частини (на етапі мультиплікації) та концентрацій сахарози на етапі ризогенезу. Із фітогормональних детермінант на етапі мультиплікації серед досліджуваних кращою була комбінація речовин із цитокініновою активністю у складі: БАП 0,2 мг/л та кінетин 0,8 мг/л. Ефективним для збільшення коефіцієнта розмноження є додавання 0,1 мл/л препарату Gibb plus (ГК4 + ГК7 ). Вирощування донорів експлантів на середовищі із БАП 0,2 мг/л, кінетин 0,3 мг/л, аденін 0,5, порівняно з контролем – БАП 1,0 мг/л, покращує ризогенез регенерантів. Найвищі показники коренеутворення виявлено на варіанті із 4 % сахарози (40 г/л).

Ключові слова: розмноження, мікроклональне розмноження, асептична культура, трофічна і гормональна детермінація.

 

Посилання: 
1. The strawberry: Composition, nutritional quality, and impact on human health / F. Giampieri et al. Nutrition 28. 2012. P. 9–19.
2. Adenosine Acts as an Active Antiplatelet Constituent in Strawberries (Fragaria × ananassa) BPB Reports / N. Ichihara et al. 2023. Vol. 6. Issue 1. P. 27–32.
3. Розсада суниці з маточників in vitro. URL: https://farmer.ua/centr-posadkovogo-materialu/rozsada-sunici-z-matochnik...
4. List of non EU phytoplasmas of Cydonia Mill., Fragaria L., Malus Mill., Prunus L., Pyrus L., Ribes L., Rubus L. and Vitis L. / C. Bragard et al. EFSA Journal. 2020. 18(1). 5930 р. DOI: 10.2903/j.efsa.2020.5930
5. Ідентифікація збудників вірусних та інших хвороб плодових, ягідних, горіхоплідних культур і хмелю. URL: https://labprice.ua/wp-content/uploads/2021/03/Patogeni-poslugi.pdf
6. Gardener. Фiтопатогеннi мiкоплазми – збудники хвороб рослин. URL: https://fruit-grower. info/2022/12/13/fitopatogenni-mikoplazmi-zbudniki-hvorob-roslin/
7. Detection and identification of 16SrXIII-F and a novel 16SrXIII phytoplasma subgroups associated with strawberry phyllody in Chile / Cui Weier et al. European Journal of Plant Pathology. 2019. 155 p. DOI: 10.1007/s10658-019-01808-w.
8. Namba S. Molecular and biological properties of phytoplasmas. Proceedings of the Japan Academy. Series B. 2019. Vol. 95. Issue 7. P. 401–418. DOI: 10.2183/pjab.95.028.
9. Літвіненко С.Г., Буджак В.В. Фітопатологія: конспект лекцій. Вид. 2-ге, випр. і доп. Чернівці: Чернівецький нац. ун-т ім. Ю. Федьковича, 2022. 92 с.
10. Удовиченко К. Вірусні хвороби суниці. URL: http://www.jagodnik.info/virusni-hvoroby-sunytsi-sadovoyi/
11. Posthuma Karin, Adams A., Hong Yiguo, Kirby M. Detection of Strawberry crinkle virus in plants and aphids by RT-PCR using conserved L gene sequences. Plant Pathology. 2002. 51. P. 266–274. DOI: 10.1046/j.1365-3059.2002.00725.x.
12. Molecular characterization of strawberry vein banding virus from China and the development of loop‑mediated isothermal amplification assays for their detection / J. Ren et al. Scientific Reports. 2022. 12. 4912 p. DOI: 10.1038/s41598-022-08981-9 https:// www.nature.com/articles/s41598-022-08981-9
13. Павлюк В. Суниця цілий рік – сорти і способи вирощування. Agroexpert. 2013. 72 с.
14. Вукович Г. Важнейшие болезни плодовых. Київ: ООО "Аграр Медиен Украина", 2010. 129 с.
15. An Optimized Protocol for Micropropagation and Acclimatization of Strawberry (Fragaria×ananassa Duch.) Variety ‘Aroma’ / J.C. Neri et al. Agronomy. 2022. 12. 968 р. DOI: 10.3390/agronomy12040968
16. Meristem culture and subsequent micropropagation of Chilean strawberry (Fragaria chiloensis (L.) Duch.) / Karla Quiroz et al. Biological Research. 2017. 50 p. DOI: 10.1186/s40659-017-0125-8.
17. Мацкевич В.В., Філіпова Л.М., Олешко О.Г. Фiзiологія та біотехнологія рослин: підручник. Біла Церква: БНАУ, 2022. 427 с.
18. Miller P.W., Belkengren R.O. Elimination of yellow edge, crinkle and vein banding viruses and certain other virus complexes from strawberries by excision and culturing of apical meristems. Plant Dis. Rep. 1963. 47. P. 298–300.
19. Adams A.N. An improved medium for strawberry meristem culture. J. Hort. Sci. 1972. 47. P. 263–264.
20. Nishi S., Oosawa K. Mass production method of virus-free strawberry plants through meristem callus. Japan Agr. Res. Quart. 1973. 7. P. 189–194.
21. Torres K.C. Tissue Culture of Strawberry (Fragaria). In: Tissue Culture Techniques for Horticultural Crops. Springer, Boston, MA. 1989. DOI: 10.1007/978-1-4615-9756-8_9
22. Effect of in vitro propagation methods on field performance of two strawberry cultivars / N.S. Nehra et al. Euphytica, 1994. 76. P. 107–115. DOI: 10.1007/ BF00024027
23. Cameron J.S., Hancock J.F., Nourse T.M. The field performance of strawberry nursery stock produced originally from runners or micropropagation. Adv. Strawberry Prod. 1985. 4. P. 56–58.
24. Юлія Немцева. Стало відомо, яку технологію вирощування полуниці використовує Tevitta. 2022. URL: https://kurkul.com/news/31477-stalo-vidomoyaku-tehnologiyu-viroschuvanny...
25. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 1962. 15. P. 473–497.
26. Мацкевич В.В. Мікроклональне розмноження видів рослин in vitro та їх постасептична адаптація: дис. … д-ра с.-г. наук: 06.01.05. Суми, 2020. 478 c.
27. Мацкевич В.В., Подгаєцький А.А., Філіпова Л.М. Мікроклональне розмноження окремих видів рослин (протоколи технологій): науково-практичний посібник. Біла Церква: БНАУ, 2019. 85 с.
28. Регулятор росту рослин ГІББ ПЛЮС (GIBB PLUS). URL: https://agrarii-razom.com.ua/preparations/gibb-plyus-gibb-plus
29. Tashmatova L.V., Matsneva O.V., Khromova T.M., Shakhov V.V. Optimization of individual elements of clonal micro-propagation of fruit and berry crops in the production system of healthy planting material. E3S Web Conf. The Role of Biotechnology in Obtaining Pure Virus-free Material. 2021. Vol. 254. DOI: 10.1051/e3sconf/202125404001
30. Терек О.І., Пацула О.І. Ріст і розвиток рослин: навч. посібн. Львів: ЛНУ імені Івана Франка, 2011. 328 с.
31. Мацкевич В.В., Подгаєцький А.А. Особливості використання форми і кількості заліза за вирощування in vitro ожини і малини. Вісник Сумського національного аграрного університету. Агрономія і біологія. 2015. Вип. 9 (30). С. 46–51. 

 

Завантажити статью: 
ДолученняРозмір
PDF icon matskevych_agro_2_2023.pdf3.33 МБ